Fusobacterium necrophorum

Fusobacterium necrophorum

ФУЗОБАКТЕРИИ — палочковидные бактерии рода Fusobacterium сем. Bacteroidaceae.

Ф. обитают на слизистых оболочках полости рта и кишечника человека и животных. Они относятся к условно-патогенным микробам (см.), к-рые участвуют в развитии гнойных и некротических процессов. Название рода Fusobacterium (веретенообразная палочка) дано в 1922 г. Кнорром (М. Knorr) без указания типового вида. С 1974 г. типовым видом считают F. nucleatum.

Ф. — облигатно анаэробные не образующие спор грамотрицательные палочки. Типичную форму тонких веретенообразных палочек, одинаковых по размеру, в отдельной культуре имеют бактерии вида F. nucleatum. F. necrophorum и фузобактерии других видов представляют собой полиморфные палочки с закругленными или слегка заостренными концами различной длины, от почти кокковидных форм до нитей длиной 10 мкм. Клетки нек-рых видов Ф. могут иметь утолщения или образовывать свободные круглые тела (сферулы). Ф. бывают неподвижными или подвижными (с перитрихиальными жгутиками). Они легко окрашиваются анилиновыми красителями, в клетках отдельных видов прокрашиваются зерна (гранулы).

Ф. — гетеротрофные организмы, хорошо растущие на кровяных плотных средах и на жидких средах с триптическим переваром казеина и переваром Хоттингера (см. Питательные среды). В среды обычно добавляют дрожжевой экстракт и цис-теин. Сыворотка крови, асцитическая жидкость, крахмал, глюкоза и углекислый газ стимулируют их рост. Ф. растут при наличии генцианового фиолетового и других красителей, что используют в селективных средах (см.). F. varium и F. mortiferum растут ири добавлении желчи. На жидких средах Ф. образуют гранулярный, хлопчатый или слизистый осадок. Культуры имеют гнилостный запах. Ф. метаболизируют пептоны, а также углеводы со слабым снижением pH среды в кислую сторону, главным продуктом ферментации является масляная к-та. Нек-рые виды Ф. гидролизуют эскулин. образуют индол, медленно разжижают желатину, непостоянно редуцируют нитраты. F. necrophorum расщепляет желчные к-ты. У F. nucleatum и F. necrophorum выявлена гетерогенность по антигенным свойствам, липополисахариды их клеточных стенок являются эндотоксинами. F. пес-rophorum образует экзотоксин с термостабильной лейкоцидальной и с термолабильной гемолитической активностью.

Ф. могут быть обнаружены при тонзиллите, пневмонии, абсцессах легкого, печени и других гнойно-воспалительных процессах. Несмотря на чувствительность ко многим антибиотикам, они могут вызвать тяжелый сепсис (см.) с явлениями септикопиемии. Наиболее часто в патол. очагах обнаруживают F. nucleatum и F. necrophorum (см. Некробациллез).

При парентеральном заражении; мышей и кроликов F. necrophorum и F. mortiferum развивается заболевание, приводящее к гибели животных. F. nucleatum проявляет слабую патогенность в чистой культуре.

При заражении в смешанной культуре синергизм сопутствующих микробов увеличивает патогенное действие F. nucleatum. Известны постоянные сочетания в патол. материале Ф. и других бактерий: F. nucleatum и спирохет при ангине Симановского—Плаута-Венсана (см. Ангина), F. nucleatum и Bacteroides nodosus при копытной гнили овец.

Библиогр.: Балтрашевич А. К. Микробы семейства Bacteroidaceae в патологии человека и животных, Журн. микр., эпид. и иммун., ЛмЪ 10, с. 14, 1979; Bergey’s manual of determinative bacteriology, ed. by R. E. Buchanan a. N. E. Gibbons, Baltimore, 1975.

Некробактериоз крупного рогатого скота – инфекционная болезнь животных, вызываемая анаэробной бактерией Fusobacterium necrophorum из рода Fusarium. Основными ее неприятными последствиями являются значительное снижение удоев и племенные потери. Хотя падеж скота при этой болезни происходит редко, ущерб хозяйствам она может наносить колоссальный. А поэтому фермерам и владельцам приусадебных хозяйств важно знать о том, как правильно проводится ее профилактика и лечение.

Немного истории

Возбудителем некробактериоза крупного рогатого скота является, таким образом, бактерия Fusobacterium necrophorum. Описана она была уже довольно-таки давно – в 1882 г. Леффлером при дифтерии телят. Выделил же эту палочку из роговицы барана, пораженного оспой, в 1881 г. Р. Кох. В последующем этот вирус выявляли также ученые Шютц и Тартаковский. Чистая культура Fusobacterium necrophorum впервые была получена Бангом в 1890 г. Независимо от него, в 1891 г. то же самое сделал микробиолог Шморл.

Некробактериоз крупного рогатого скота: возбудитель болезни

Микроб Fusobacterium necrophorum является полиморфным и имеет форму палочек либо же тонких длинных нитей. Последние могут формировать шаровидные или колбовидные вздутия. Бактерия Fusobacterium necrophorum неподвижна, не имеет жгутиков и не образует спор или капсул. При этом она ферментирует глюкозу, левулезу, галактозу, сахарозу, салицин и мальтозу. Аммиак этот микроб не вырабатывает. Не восстанавливает он и нитраты в нитраты.

Возбудитель Fusobacterium necrophorum относительно нестойкий. Но, к сожалению, он может длительное время сохраняться в самых разных объектах окружающей среды. Так, в фекалиях животных он живет до 50 суток, в моче и воде – до 15, а в молоке – до 35 дней. Солнечные лучи на этот микроб действуют губительно. Находясь не в тени, бактерия погибает уже через полдня.

Чувствительность Fusobacterium necrophorum к разного рода дезинфектантам высокая. Поэтому, соблюдая чистоту в коровниках, можно значительно снизить риск развития у животных этого заболевания. Убивают бактерию Fusobacterium necrophorum такие антисептики, как:

  • едкий натр и калий (0.5%);
  • лизол (5%);
  • креолин;
  • фенол (2%);
  • перманганат калия (1:1000).

Также этот микроб крайне чувствителен к тетрациклиновым препаратам.

Симптомы заболевания

Проявляет себя некробактериоз крупного рогатого скота в основном гнойными поражениями. Проявляются они у КРС чаще всего:

  • на вымени;
  • нижних частях конечностей;
  • слизистой оболочке влагалища и матки.

Некробактериоз крупного рогатого скота характеризуется также дифтеритическим воспалением слизистых гортани, ротовой полости и внутренних органов. Такие симптомы обычно наблюдаются у молодняка.

Каким образом происходит заражение

Развивается некробактериоз у КРС чаще всего при травмировании с повреждением кожных покровов. В ранах, в результате нарушения целостности капилляров, образуется благоприятная для жизни этой анаэробной палочки бескислородная среда. В особенности хорошо размножается этот вирус в крови гематом. В результате жизнедеятельности Fusobacterium necrophorum образуется огромное количество токсичных веществ. Последние блокируют внутриклеточные ферментные системы, что вызывает некроз тканей. При этом происходит еще и такой неблагоприятный процесс, как закупорка капилляров микробными клетками.

Происходить заражение может нет только через раны, но и через слизистые оболочки ЖКТ, при патологических родах или же при случке.

Распространяется по организму этот вирус гематогенным путем, то есть с током крови. В результате этого в тканях возникают вторичные очаги поражения. Кроме того, из-за проникновения вируса в кровь, развивается септицемия и образуются метастазы некротических очагов в сердце, печени и легких. Если заболевание переходит в эту стадию, лечение обычно безрезультатно. При образовании метастаз некробактериоз крупного рогатого скота переходит в злокачественную форму и животное в большинстве случаев погибает. Иммунитет у коров, перенесших эту болезнь, к сожалению, практически не вырабатывается.

В каких случаях животное может быть инфицировано

Заражение некробактериозом КРС часто происходит:

  • из-за антисанитарии в коровнике;
  • из-за несоблюдения положенной периодичности профилактической обрезки копыт;
  • из-за недостатков оборудования коровника (в сильно укороченных стойлах, при отсутствии у животных подстилки);
  • в результате хронического ацидоза рубца.

Источники заражения

Выделяется возбудитель некробактериоза в окружающую среду с калом, слюной и мочой зараженных животных. Также этот вирус содержится в гнойных выделениях.

На ферму возбудитель некробактериоза чаще всего попадает с приобретенным больным ремонтным молодняком или производителями. Через некоторое время после заражения первого животного, инфекция в коровнике приобретает стационарный характер. Если меры по лечению КРС вовремя не принимаются, патологические процессы утяжеляются из-за многократного переноса бактерий от одной особи к другой.

Протекает болезнь некробактериоз крупного рогатого скота в коровнике неравномерно, проявляя себя небольшими эпизоотическими вспышками (последовательным заражением животных).

Клиническая картина

Длится инкубационный период некробактериоза несколько дней. Признаки этой заразной болезни зависят от многих факторов. К примеру, таких, как возраст животного, форма проявления некробактериоза и особенности его течения. Болезнь эта может быть как острой, так и хронической, а также доброкачественной или злокачественной.

Читайте также:  Можно ли сдать кровь в другом городе

Различают три основные формы некробактериоза:

  • конечностей (копытный);
  • слизистых и кожи;
  • внутренних органов.

Наиболее распространенным является копытный некробактериоз крупного рогатого скота. Фото характерных поражений, появляющихся при этой болезни, представлено ниже на странице. Чаще всего у КРС при этой форме заболевания страдают задние конечности (или одна из них). Начинается такой некробактериоз обычно с покраснения межкопытной щели. На следующем этапе болезни появляются кровоточащие гнойные раны, свищи и абсцессы. Животное испытывает крайне неприятные ощущения и придерживает пораженную конечность на весу. Во время осмотра обнаруживается отечность сустава копытной фаланги. При дальнейшем развитии болезни наблюдается поражение связок, костей и сухожилий. Если процесс принимает злокачественный характер, у животного начинают болеть и вышележащие суставы – вплоть до тазобедренного.

Температура тела у зараженной особи может подниматься до 42 гр. Иногда она также остается и в пределах нормы. Болеют некробактериозом конечностей в основном лишь взрослые коровы и быки. У телят эта форма проявляется крайне редко.

При некробактериозе слизистых и кожи поражения отмечаются чаще всего в области туловища, обычно в задней его части. У молодняка также могут наблюдаться гнойные некрозы слизистых оболочек рта, десен, трахей, языка, носа, гортани, ЖКТ и т. д.

Некробактериоз внутренних органов у КРС проявляет себя чаще всего абсцессом печени. При этом характерных клинических признаков обычно не наблюдается. Но сами животные, заразившиеся этой формой некробактериоза, чувствуют себя крайне неважно – плохо едят, быстро худеют, значительно снижают продуктивность, стонут при попытке встать. При некробактериозе внутренних органов, помимо всего прочего, у коров может сильно повышаться температура тела.

Диагностика

Помимо симптоматических признаков, некробактериоз крупного рогатого скота (фото возбудителя представлено чуть ниже) может определяться по результатам лабораторных исследований. Такая проверка должна проводиться обязательно. Дело в том, что клиническая картина этого заболевания может быть похожа на другие распространенные инфекции КРС. Это может быть, к примеру, ящур, стоматит везикулярный , вирусная диарея, чума или дерматофилез. Также при диагностике некробактериоза должны быть исключены артриты разной этиологии, эрозии, язва копыт, дерматит.

Как же конкретно определяется такое заболевание, как некробактериоз крупного рогатого скота? Диагностика его обычно выполняется по отобранному кусочку пораженной некрозом ткани, взятому на границе со здоровым участком. В лаборатории этот материал помещают в особую среду (чаще всего Китт — Тароцци с 10% сывороткой крови) и инкубируют в течение двух дней при температуре 37 С. Для определения сопутствующей микрофлоры дополнительно проводят исследования на МПБ и МПА. Окончательный диагноз животным ставится в том случае, если в мазках обнаруживается возбудитель.

Некробактериоз крупного рогатого скота: лечение антибиотиками

Принимать меры при обнаружении признаков этого заболевания следует незамедлительно. Иначе патологические изменения могут стать необратимыми. Проводится лечение некробактериоза в комплексе. При этом в крупных хозяйствах используются групповые методики, а в мелких – индивидуальные. При лечении дойных коров применяются только препараты, не переходящие в молоко.

При установке у КРС такого диагноза, как некробактериоз, выполняют следующие оздоровительные мероприятия:

  • Делают тщательную химическую обработку пораженных участков с удалением ткани.
  • Проводят промывку ран перекисью водорода, раствором фурацилина и т.д.
  • Применяют жидкие и порошкообразные антисептические препараты.

Анаэробные бактерии, в том числе и Fusobacterium necrophorum, всегда образуют барьер между сосудистым руслом и пораженными тканями. А это, в свою очередь, очень сильно затрудняет проникновение лекарств. Поэтому антибиотики при лечении некробактериоза применяют в повышенных дозах. Помимо тетрациклинов, к наиболее эффективным видам лекарств из всех, применяемых при этом заболевании, относят:

  • левомицетин;
  • ампициллин;
  • эритромицин;
  • пенициллин;
  • телазин.

Также для лечения такой болезни, как некробактериоз крупного рогатого скота у коров, могут использоваться современные антибактериальные лекарственные средства широкого спектра действия. Для местного применения хорошо подходят в том числе и аэрозольные антибиотики на основе вышеуказанных препаратов. Их используют в основном для обработки копыт после химической чистки.

Ограничения в хозяйствах при вспышке некробактериоза

При обнаружении у животных этого заболевания на ферме принимают следующие меры:

  • инфицированных животных изолируют от стада;
  • копыта здоровых быков и коров обрабатывают в ножных дезинфицирующих ваннах;
  • производят лечение заболевших животных по описанной выше методике.

Если лечение, ввиду запущенности некробактериоза, нецелесообразно, коров и быков сдают на санитарную бойню.

О чем нужно знать

К сожалению, некробактериоз крупного рогатого скота – заболевание заразное, в том числе и для людей. Случаи заражения персонала ферм этой инфекцией редки, но не принимать во внимание существующую опасность не стоит. Для того чтобы исключить возможность заражения работающих на ферме людей, при вспышке некробактериоза скота следует:

  • в обязательном порядке соблюдать правила личной гигиены при работе с больными животными (надевать спецодежду и перчатки, после работы принимать душ);
  • все имеющиеся на коже раны нужно вовремя обрабатывать эффективными антисептическими средствами.

В помещении для персонала фермы обязательно должна присутствовать аптечка, укомплектованная всеми необходимыми по нормативам лекарственными средствами.

Профилактика некробактериоза

Ряд заблаговременно проведенных мероприятий помогает предотвратить вспышку такого опасного заболевания, как некробактериоз крупного рогатого скота. Вакцина для профилактики этой болезни может применяться поливалентная, эмульгированная ВИЭВ или «Нековак». В хозяйствах, расположенных неподалеку от неблагополучных по некробактериозу ферм, помимо всего прочего, должны приниматься следующие меры:

  • Персоналом фермы должны проводиться мероприятия, направленные на общее укрепление организма животных. Для этого в первую очередь выполняется балансировка кормления животных. В рацион коров, быков и телят в обязательном порядке вводят различные витаминные и минеральные добавки. Помимо этого, тщательно следят за качеством кормов.
  • Выполняют мероприятия, направленные на улучшение условий содержания животных на ферме. Навоз в стойлах должен убираться тщательно и вовремя. Также при подозрении на возможное заражение некробактериозом, все помещения обязательно следует осмотреть на предмет наличия травмоопасных предметов.
  • Очищают и осушают пастбища и выгульные площадки.

Помимо всего прочего, должна периодически проводиться на ферме при вспышке такого заболевания, как некробактериоз крупного рогатого скота, дезинфекция. Для того чтобы свести возможные риски потери поголовья к минимуму, также следует выполнять своевременную профилактику и лечение эндометритов и маститов. Дело в том, что эти заболевания могут сильно осложнять течение некробактериоза.

Как поступают с мясом и молоком

Некробактериоз крупного рогатого скота наносит хозяйствам ощутимый вред прежде всего из-за снижения продуктивности заболевших животных. При местном патологическом процессе на утилизацию отправляют только пораженные участки туши коровы или быка. Если болезнь протекала септически, все продукты убоя сжигают. Если у животного поражено несколько внутренних органов, но его туша при этом имеет достаточную степень упитанности, решение о возможности использования мяса в пищу или для продажи принимается после проведения тщательного микробиологического исследования в лабораторных условиях.

Шкуры животных, болевших некробактериозом, высушивают в изолированных помещениях, дезинфицируют согласно инструкции и реализуют. Молоко больных коров употреблять в пищу можно только после пастеризации, проведенной по всем правилам. От здоровых животных даже с неблагополучной фермы его допускается реализовывать свободно.

  • References
  • Facebook
  • Twitter
  • LinkedIn
  • Google+

This is an anaerobic gram-negative bacillus that can be isolated from the oropharynx of healthy individuals but that has been associated with sore throat. [38] It can also cause life-threatening disease, including Lemierre syndrome or postanginal sepsis (internal jugular vein thrombophlebitis, septic pulmonary emboli, and bacteremia. [39] Some studies also suggest a role for this bacterium in recurrent or persistent sore throat. [40, 41] However, it should always be considered if a patient presents with severe pharyngitis. [42] It is more common in adolescents and young adults.

Читайте также:  Начальный отдел пищеварительного тракта

The prevalence of Fusobacterium necrophorum infection among primary care patients presenting with sore throat was reported to be 19.4% (95% CI, 14.7%-24.1%). [26]

Related Questions:

References

[Guideline] Shulman ST, Bisno AL, Clegg HW, et al. Clinical practice guideline for the diagnosis and management of group A streptococcal pharyngitis: 2012 update by the Infectious Diseases Society of America. Clin Infect Dis. 2012 Nov 15. 55(10):1279-82. [Medline].

Spellerberg B, Brandt C. Streptococcus. Manual of Clinical Microbiology. 9th edition. 2007. 412-29.

Guilherme L, Kalil J, Cunningham M. Molecular mimicry in the autoimmune pathogenesis of rheumatic heart disease. Autoimmunity. 2006 Feb. 39(1):31-9. [Medline].

Dale JB. Current status of group A streptococcal vaccine development. Adv Exp Med Biol. 2008. 609:53-63. [Medline].

Stollerman GH, Dale JB. The importance of the group a streptococcus capsule in the pathogenesis of human infections: a historical perspective. Clin Infect Dis. 2008 Apr 1. 46(7):1038-45. [Medline].

Sriskandan S, Faulkner L, Hopkins P. Streptococcus pyogenes: Insight into the function of the streptococcal superantigens. Int J Biochem Cell Biol. 2007. 39(1):12-9. [Medline].

Musher DM. How contagious are common respiratory tract infections?. N Engl J Med. 2003 Mar 27. 348(13):1256-66. [Medline].

Brook I, Gober AE. Persistence of group A beta-hemolytic streptococci in toothbrushes and removable orthodontic appliances following treatment of pharyngotonsillitis. Arch Otolaryngol Head Neck Surg. 1998 Sep. 124(9):993-5. [Medline].

Roos K, Lind L, Holm SE. Beta-haemolytic streptococci group A in a cat, as a possible source of repeated tonsillitis in a family. Lancet. 1988 Nov 5. 2(8619):1072. [Medline].

Wilson KS, Maroney SA, Gander RM. The family pet as an unlikely source of group A beta-hemolytic streptococcal infection in humans. Pediatr Infect Dis J. 1995 May. 14(5):372-5. [Medline].

Schappert SM, Rechtsteiner EA. Ambulatory medical care utilization estimates for 2006. Natl Health Stat Report. 2008 Aug 6. 1-29. [Medline].

Carapetis JR, Steer AC, Mulholland EK, Weber M. The global burden of group A streptococcal diseases. Lancet Infect Dis. 2005 Nov. 5(11):685-94. [Medline].

Pfoh E, Wessels MR, Goldmann D, Lee GM. Burden and economic cost of group A streptococcal pharyngitis. Pediatrics. 2008 Feb. 121(2):229-34. [Medline].

Alter SJ, Vidwan NK, Sobande PO, Omoloja A, Bennett JS. Common childhood bacterial infections. Curr Probl Pediatr Adolesc Health Care. 2011 Nov. 41(10):256-83. [Medline].

Dagnelie CF, van der Graaf Y, De Melker RA. Do patients with sore throat benefit from penicillin? A randomized double-blind placebo-controlled clinical trial with penicillin V in general practice. Br J Gen Pract. 1996 Oct. 46(411):589-93. [Medline].

Shapiro DJ, Lindgren CE, Neuman MI, Fine AM. Viral Features and Testing for Streptococcal Pharyngitis. Pediatrics. 2017 May. 139 (5):[Medline].

Centor RM, Allison JJ, Cohen SJ. Pharyngitis management: defining the controversy. J Gen Intern Med. 2007 Jan. 22(1):127-30. [Medline].

Gerber MA, Randolph MF, Martin NJ, Rizkallah MF, Cleary PP, Kaplan EL. Community-wide outbreak of group G streptococcal pharyngitis. Pediatrics. 1991 May. 87(5):598-603. [Medline].

Cohen D, Ferne M, Rouach T, Bergner-Rabinowitz S. Food-borne outbreak of group G streptococcal sore throat in an Israeli military base. Epidemiol Infect. 1987 Oct. 99(2):249-55. [Medline]. [Full Text].

Stryker WS, Fraser DW, Facklam RR. Foodborne outbreak of group G streptococcal pharyngitis. Am J Epidemiol. 1982 Sep. 116(3):533-40. [Medline].

Turner JC, Hayden FG, Lobo MC, Ramirez CE, Murren D. Epidemiologic evidence for Lancefield group C beta-hemolytic streptococci as a cause of exudative pharyngitis in college students. J Clin Microbiol. 1997 Jan. 35(1):1-4. [Medline].

Zaoutis T, Attia M, Gross R, Klein J. The role of group C and group G streptococci in acute pharyngitis in children. Clin Microbiol Infect. 2004 Jan. 10(1):37-40. [Medline].

Llor C, Madurell J, Balagué-Corbella M, Gómez M, Cots JM. Impact on antibiotic prescription of rapid antigen detection testing in acute pharyngitis in adults: a randomised clinical trial. Br J Gen Pract. 2011 May. 61(586):e244-51. [Medline]. [Full Text].

Gerber MA, Baltimore RS, Eaton CB, Gewitz M, Rowley AH, Shulman ST. Prevention of rheumatic fever and diagnosis and treatment of acute Streptococcal pharyngitis: a scientific statement from the American Heart Association Rheumatic Fever, Endocarditis, and Kawasaki Disease Committee of the Council on Cardiovascular Disease in the Young, the Interdisciplinary Council on Functional Genomics and Translational Biology, and the Interdisciplinary Council on Quality of Care and Outcomes Research: endorsed by the American Academy of Pediatrics. Circulation. 2009 Mar 24. 119(11):1541-51. [Medline].

Shah M, Centor RM, Jennings M. Severe acute pharyngitis caused by group C streptococcus. J Gen Intern Med. 2007 Feb. 22(2):272-4. [Medline].

Marchello C, Ebell MH. Prevalence of Group C Streptococcus and Fusobacterium Necrophorum in Patients With Sore Throat: A Meta-Analysis. Ann Fam Med. 2016 Nov. 14 (6):567-574. [Medline].

American Academy of Pediatrics. Arcanobacterium haemolyticum Infections. Red Book: Report of the Committee on Infectious Diseases. 29th ed. Elk Grove Village, IL: American Academy of Pediatrics; 2012. 238-9.

Miller RA, Brancato F, Holmes KK. Corynebacterium hemolyticum as a cause of pharyngitis and scarlatiniform rash in young adults. Ann Intern Med. 1986 Dec. 105(6):867-72. [Medline].

Morris SR, Klausner JD, Buchbinder SP, et al. Prevalence and incidence of pharyngeal gonorrhea in a longitudinal sample of men who have sex with men: the EXPLORE study. Clin Infect Dis. 2006 Nov 15. 43(10):1284-9. [Medline].

Holder NA. Gonococcal infections. Pediatr Rev. 2008 Jul. 29(7):228-34. [Medline].

Papp JR, Ahrens K, Phillips C, Kent CK, Philip S, Klausner JD. The use and performance of oral-throat rinses to detect pharyngeal Neisseria gonorrhoeae and Chlamydia trachomatis infections. Diagn Microbiol Infect Dis. 2007 Nov. 59(3):259-64. [Medline].

Centers for Disease Control and Prevention. Press Release. First-line Oral Gonorrhea Treatment Available Again in United States. April 25, 2008.

Esposito S, Blasi F, Bosis S, et al. Aetiology of acute pharyngitis: the role of atypical bacteria. J Med Microbiol. 2004 Jul. 53:645-51. [Medline].

Sendi P, Graber P, Lepere F, Schiller P, Zimmerli W. Mycoplasma pneumoniae infection complicated by severe mucocutaneous lesions. Lancet Infect Dis. 2008 Apr. 8(4):268. [Medline].

Arbaji A, Kharabsheh S, Al-Azab S, et al. A 12-case outbreak of pharyngeal plague following the consumption of camel meat, in north-eastern Jordan. Ann Trop Med Parasitol. 2005 Dec. 99(8):789-93. [Medline].

American Academy of Pediatrics. Tularemia. Red Book: Report of the Committee on Infectious Diseases. 29th ed. Elk Grove Village, IL: American Academy of Pediatrics; 2012. 768-9.

American Academy of Pediatrics. Diphtheria. Red Book: Report of the Committee on Infectious Diseases. 29th ed. Elk Grove Village, IL: American Academy of Pediatrics; 2012. 307-11.

Amess JA, O’Neill W, Giollariabhaigh CN, Dytrych JK. A six-month audit of the isolation of Fusobacterium necrophorum from patients with sore throat in a district general hospital. Br J Biomed Sci. 2007. 64(2):63-5. [Medline].

American Academy of Pediatrics. Fusobacterium Infections. Red Book: Report of the Committee on Infectious Diseases. 29th ed. Elk Grove Village, IL: American Academy of Pediatrics; 2012. 331-2.

Batty A, Wren MW. Prevalence of Fusobacterium necrophorum and other upper respiratory tract pathogens isolated from throat swabs. Br J Biomed Sci. 2005. 62(2):66-70. [Medline].

Jensen A, Hagelskjaer Kristensen L, Prag J. Detection of Fusobacterium necrophorum subsp. funduliforme in tonsillitis in young adults by real-time PCR. Clin Microbiol Infect. 2007 Jul. 13(7):695-701. [Medline].

Читайте также:  Как разводить лекарство для ингалятора

Lundin MS, Bastakoti S, Havlichek D, Laird-Fick H. Lemierre’s syndrome and 2016 American College of Physician guidelines for pharyngitis: no to empiric coverage for bacterial pharyngitis. While no role for routine Fusobacterium PCR, keep suspicion for this pathogen. BMJ Case Rep. 2018 Jul 19. 2018:[Medline].

Catanzaro FJ, Stetson CA, Morris AJ, et al. The role of the streptococcus in the pathogenesis of rheumatic fever. Am J Med. 1954 Dec. 17(6):749-56. [Medline].

American Academy of Pediatrics. Group A Streptococcal Infections. Red Book: Report of the Committee on Infectious Diseases. 29th ed. Elk Grove Village, IL: American Academy of Pediatrics; 2012. 668-80.

Steer AC, Danchin MH, Carapetis JR. Group A streptococcal infections in children. J Paediatr Child Health. 2007 Apr. 43(4):203-13. [Medline].

Windfuhr JP, Toepfner N, Steffen G, Waldfahrer F, Berner R. Clinical practice guideline: tonsillitis I. Diagnostics and nonsurgical management. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2016 Apr. 273 (4):973-87. [Medline].

Fine AM, Nizet V, Mandl KD. Large-scale validation of the Centor and McIsaac scores to predict group A streptococcal pharyngitis. Arch Intern Med. 2012 Jun 11. 172 (11):847-52. [Medline].

Kalra MG, Higgins KE, Perez ED. Common Questions About Streptococcal Pharyngitis. Am Fam Physician. 2016 Jul 1. 94 (1):24-31. [Medline].

Gerber MA. Diagnosis and treatment of pharyngitis in children. Pediatr Clin North Am. 2005 Jun. 52(3):729-47, vi. [Medline].

Tanz RR, Gerber MA, Kabat W, Rippe J, Seshadri R, Shulman ST. Performance of a rapid antigen-detection test and throat culture in community pediatric offices: implications for management of pharyngitis. Pediatrics. 2009 Feb. 123(2):437-44. [Medline].

Gerber MA, Shulman ST. Rapid diagnosis of pharyngitis caused by group A streptococci. Clin Microbiol Rev. 2004 Jul. 17(3):571-80, table of contents. [Medline].

Dodd M, Adolphe A, Parada A, Brett M, Culbreath K, Mercier RC. Clinical Impact of a Rapid Streptococcal Antigen Test on Antibiotic Use in Adult Patients. Diagn Microbiol Infect Dis. 2018 Aug. 91 (4):339-344. [Medline].

Salkind AR, Wright JM. Economic Burden of Adult Pharyngitis: The Payer’s Perspective. Value Health. 2007 Dec 17. [Medline].

Altamimi S, Khalil A, Khalaiwi KA, Milner R, Pusic MV, Al Othman MA. Short versus standard duration antibiotic therapy for acute streptococcal pharyngitis in children. Cochrane Database Syst Rev. 2009 Jan 21. CD004872. [Medline].

Moore M, Stuart B, Hobbs FR, Butler CC, Hay AD, Campbell J, et al. Influence of the duration of penicillin prescriptions on outcomes for acute sore throat in adults: the DESCARTE prospective cohort study in UK general practice. Br J Gen Pract. 2017 Sep. 67 (662):e623-e633. [Medline].

Lennon DR, Farrell E, Martin DR, Stewart JM. Once-daily amoxicillin versus twice-daily penicillin V in group A beta-haemolytic streptococcal pharyngitis. Arch Dis Child. 2008 Jun. 93(6):474-8. [Medline].

Clegg HW, Ryan AG, Dallas SD, et al. Treatment of streptococcal pharyngitis with once-daily compared with twice-daily amoxicillin: a noninferiority trial. Pediatr Infect Dis J. 2006 Sep. 25(9):761-7. [Medline].

Shvartzman P, Tabenkin H, Rosentzwaig A, Dolginov F. Treatment of streptococcal pharyngitis with amoxycillin once a day. BMJ. 1993 May 1. 306(6886):1170-2. [Medline]. [Full Text].

van Driel ML, De Sutter AI, Keber N, Habraken H, Christiaens T. Different antibiotic treatments for group A streptococcal pharyngitis. Cochrane Database Syst Rev. 2010 Oct 6. CD004406. [Medline].

Pichichero ME, Casey JR. Bacterial eradication rates with shortened courses of 2nd- and 3rd-generation cephalosporins versus 10 days of penicillin for treatment of group A streptococcal tonsillopharyngitis in adults. Diagn Microbiol Infect Dis. 2007 Oct. 59(2):127-30. [Medline].

Lakoš AK, Gašparic M, Kovacic D, Pangercic A, Kukuruzovic MM, Baršic B. Safety and effectiveness of azithromycin in the treatment of respiratory infections in children. Curr Med Res Opin. 2011 Dec 1. [Medline].

Chan DS, Demers DM, Bass JW. Antimicrobial liquid formulations: a blind taste comparison of three brands of penicillin VK and three brands of amoxicillin. Ann Pharmacother. 1996 Feb. 30(2):130-2. [Medline].

Gruchalla RS, Pirmohamed M. Clinical practice. Antibiotic allergy. N Engl J Med. 2006 Feb 9. 354(6):601-9. [Medline].

Richter SS, Heilmann KP, Beekmann SE, et al. Macrolide-resistant Streptococcus pyogenes in the United States, 2002-2003. Clin Infect Dis. 2005 Sep 1. 41(5):599-608. [Medline].

Malhotra-Kumar S, Lammens C, Chapelle S, et al. Macrolide- and telithromycin-resistant Streptococcus pyogenes, Belgium, 1999-2003. Emerg Infect Dis. 2005 Jun. 11(6):939-42. [Medline].

Tanz RR, Shulman ST, Shortridge VD, et al. Community-based surveillance in the united states of macrolide-resistant pediatric pharyngeal group A streptococci during 3 respiratory disease seasons. Clin Infect Dis. 2004 Dec 15. 39(12):1794-801. [Medline].

Kaplan EL. The group A streptococcal upper respiratory tract carrier state: an enigma. J Pediatr. 1980 Sep. 97(3):337-45. [Medline].

Munck H, Jørgensen AW, Klug TE. Antibiotics for recurrent acute pharyngo-tonsillitis: systematic review. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2018 Jul. 37 (7):1221-1230. [Medline].

American Academy of Paediatrics. Group A Streptococcal Infections. Kimberlin DW, Brady MT, Jackson MA, Long SS. Red Book: 2018 Report of the Committee on Infectious Diseases. 31st. Itasca, IL: American Academy of Pediatrics; 2018. 755-756.

Moore M, Stuart B, Hobbs FR, Butler CC, Hay AD, Campbell J, et al. Symptom response to antibiotic prescribing strategies in acute sore throat in adults: the DESCARTE prospective cohort study in UK general practice. Br J Gen Pract. 2017 Sep. 67 (662):e634-e642. [Medline].

Hayward GN, Hay AD, Moore MV, Jawad S, Williams N, Voysey M, et al. Effect of Oral Dexamethasone Without Immediate Antibiotics vs Placebo on Acute Sore Throat in Adults: A Randomized Clinical Trial. JAMA. 2017 Apr 18. 317 (15):1535-1543. [Medline].

Francis DO, Merati AL. Dexamethasone Without Antibiotics for Sore Throat. JAMA. 2017 Aug 22. 318 (8):753. [Medline].

Sardovski S. Dexamethasone Without Antibiotics for Sore Throat. JAMA. 2017 Aug 22. 318 (8):752-753. [Medline].

Georgalas CC, Tolley NS, Narula PA. Tonsillitis. BMJ Clin Evid. 2014 Jul 22. 2014:[Medline].

Windfuhr JP, Toepfner N, Steffen G, Waldfahrer F, Berner R. Clinical practice guideline: tonsillitis II. Surgical management. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2016 Apr. 273 (4):989-1009. [Medline].

Orvidas LJ, St Sauver JL, Weaver AL. Efficacy of tonsillectomy in treatment of recurrent group A beta-hemolytic streptococcal pharyngitis. Laryngoscope. 2006 Nov. 116(11):1946-50. [Medline].

[Guideline] Baugh RF, Archer SM, Mitchell RB, et al. Clinical practice guideline: tonsillectomy in children. Otolaryngol Head Neck Surg. 2011 Jan. 144(1 Suppl):S1-30. [Medline].

Steer AC, Dale JB, Carapetis JR. Progress toward a global group a streptococcal vaccine. Pediatr Infect Dis J. 2013 Feb. 32 (2):180-2. [Medline].

Steer AC, Carapetis JR, Dale JB, Fraser JD, Good MF, Guilherme L, et al. Status of research and development of vaccines for Streptococcus pyogenes. Vaccine. 2016 Jun 3. 34 (26):2953-2958. [Medline].

Wozniak A, Scioscia N, García PC, Dale JB, Paillavil BA, Legarraga P, et al. Protective immunity induced by an intranasal multivalent vaccine comprising 10 Lactococcus lactis strains expressing highly prevalent M-protein antigens derived from Group A Streptococcus. Microbiol Immunol. 2018 Jun. 62 (6):395-404. [Medline].

Kassutto S, Rosenberg ES. Primary HIV type 1 infection. Clin Infect Dis. 2004 May 15. 38(10):1447-53. [Medline].

Ссылка на основную публикацию
Furosemide medinfoblog com
Инструкция русский қазақша Торговое название Международное непатентованное название Лекарственная форма Состав Одна таблетка содержит активное вещество – фуросемид – 40...
Boro plus healthy skin фиолетовый инструкция
Инструкция по применению Некоторые факты Многие лекарственные травы и растения благодаря своим целебным свойствам широко применяются как в альтернативной, так...
Bulla ethmoidalis
Решетчатая кость (os ethmoidale) участвует в образовании передней части основания мозгового отдела черепа, а также в образовании стенок носовой полости...
Fusobacterium necrophorum
ФУЗОБАКТЕРИИ — палочковидные бактерии рода Fusobacterium сем. Bacteroidaceae. Ф. обитают на слизистых оболочках полости рта и кишечника человека и животных....
Adblock detector